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动物定量给药,实验动物的常用给药方法包括哪些

本文目录一览实验动物的常用给药方法包括哪些2,定性和定量评价给药后动物的运动功能行为改变协调功能3,动物实验常用动物及给药方法有哪些4,给动物打针的那种用什么单位对药克还是千克还是什么啊5,动物用药按体重6,药理学实验动物用药量计算7,……

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1,实验动物的常用给药方法包括哪些

腹腔注射 皮下注射 静脉注射 灌胃
静脉给药,灌胃给药,皮下给药

动物定量给药

2,定性和定量评价给药后动物的运动功能行为改变协调功能

A

动物定量给药

3,动物实验常用动物及给药方法有哪些

静脉给药,灌胃给药,皮下给药
常用动物有小鼠,大鼠,兔,蟾蜍等。主要给药方法有喂食(将药掺入水或食物中),静脉注射,腹腔注射等。

动物定量给药

4,给动物打针的那种用什么单位对药克还是千克还是什么啊

在兽药使用剂量计算过程中,必须先弄清药物含量的重量、容量,国际单位与毫克之间的换算,千万不要混淆,下面举例说明。某养猪户利用环丙沙星治疗猪下痢,使用环丙沙星注射液,剂量为2.5毫克/千克体重,药物规格含量2.5%,10毫升(含0.25克)。如55千克的猪,则需药量为:2.5×55=152.5毫克。计算该注射液中环丙沙星含量为25毫克/毫升,计算出152.5毫克环丙沙星需该注射剂的体积是152.5/25=6.1毫升。55千克的猪应注射6.1毫升环丙沙星。
龙虎鼠蛇

5,动物用药按体重

也是按体重,但是,个体小的动物单位体重用药量比人大,如狗猫等,个体大的单位体重用药量小,如牛,马等. 现在养殖的动物口服用药多是换算成采食量计算,如养猪厂,多是按每吃一千斤料用多少,而养鸡的多换算成饮水量,药的说明就是每瓶(袋)加水多少斤等,你想了解更多,可以找兽医药理手册之类的书看一下,比如胡功政,李荣誉主编的,还有默克兽医词典等书
我觉得动物一般不会去刻意控制体重,因为他们大多数时间都在为求吃饱而到处觅食。而且长期处于运动,饥饿的状态。除非生病了,导致体重增加。如果需要增肥,增加脂肪,一般也是为了过冬什么,储存的脂肪也会被消耗掉。

6,药理学实验动物用药量计算

静注硫喷妥钠剂量为100mg/kg,容量为1ml/kg,表示100mg|1ml.该药0.5g=500mg,既是500|100=5ml, 兔体重2.2kg,容量为1ml/kg,表示,2.2*1=2.2ml所以应配成5ml。注射的药量是2.2ml
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7,动物试验给药剂量怎么定

ic50是半抑制率,意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度,然后计算各自的抑制率,以药品的浓度为横坐标,抑制率为纵坐标作图,然后得到50%抑制率时候的药品浓度,就是ic50。要点:药品2倍稀释,多做梯度,做点线图即可!观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量: 1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量
观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量:1.先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一作为应用剂量,一般可取1/10~1/5。2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的剂量。4.确定剂量后,如第一次用药的作用不明显,动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则更应慎重分析。5.用大动物进行实验时,防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15~1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。6.确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼龄动物,剂量应减小。如以狗为例:6个月以上的狗给药剂量为1份时,3~6个月的给1/2份,45~89日的给1/4份,20~44日的给1/8份,10~19日的给1/16份。7.确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同。以口服量为100时,皮下注射量为30~50,肌肉注射量为20~30,静脉注射量为25。二、人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同,一般动物的耐受性要比人大,单位体重的用药量动物比人要高。必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算:人用药量:1小鼠、大鼠:50~100兔、豚鼠:15~20狗、猫:5~10以上系按单位体重口服用药量换算。如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射,换算比例应适当减小些。

8,给药剂量临床常用量动物等效面积系数培养基内血清稀释度中培养

虽然我很聪明,但这么说真的难到我了
有限稀释法是一种常用的克隆方法。 将需要再克隆的细胞株自培养孔内吸出并作细胞计数,计出1mL的细胞数。 用HT培养液稀释, 使细胞浓度为50~60个/mL,于96孔培养板中每孔加0.1mL(五六个细胞/孔)。接种2排,剩余细胞悬液用HT培养液作倍比稀释,再接种2排,如此类推,直至使每孔含0.5~1个细胞。培养7~10d后,选择单个克隆生长的阳性孔再一次进行克隆。一般需要如此重复3~5次,直至达100%阳性孔率时即可,以确保抗体由单个克隆所产生。例如: 实验细胞克隆化培养技术—有限稀释法一、实验目的: 1、掌握用有限稀释法进行细胞克隆化培养技术; 2、学会细胞克隆形成的辩观察技能; 3、配合抗体分泌细胞筛选技术,确定抗体分泌细胞。 二、实验原理: 克隆化培养即单细胞培养技术,用有限稀释法进行杂交瘤细胞克隆化培养,可以及时确定阳性杂交瘤细胞株,同时淘汰因发生染色体丢失或抗体的轻、重链基因分离而出现无抗体分泌阴性细胞株。 一般杂交瘤细胞需经过52—3次反复克隆后,才能达到100%细胞阳性率。 该办法亦适用于一般细胞培养中的细胞纯化、突变细胞株的选择,识别和分离。是细胞株的常用方法。 三、实验材料: 杂交瘤细胞、25毫升培养瓶、96孔细胞培养板(天津有机玻璃厂)、移液管(1毫升、5毫升、10毫升)、弯头滴管、倒置显微镜、CO2培养箱、白细胞计数板、计数器、盖玻片、防水笔、RPMI-1640、小牛血清、青链霉素、10毫升刻度离心管,00橡胶塞,饲养细胞(3-6×105/ml、见腹腔细胞的制备)。 四、实验步骤: 1、分装了每孔0.1毫升腹腔细胞的96孔细胞培养板(可提前24小时准备就绪,置CO2培养箱中备用); 2、自细胞培养瓶中收集长势良好的杂交瘤细胞(亦可自24孔培养板孔中收集),制成悬液。3、按白细胞计数方法准确计得细胞悬液的细胞数,一般在105/毫升左右。 4、取3支10毫升刻度离心管排列在超净工作台试管架上,先用无血清培养基将细胞稀释至103/毫升,再用含15%小牛血清的完全培养基稀释到101/毫升细胞,即每0.1毫升1个细胞。 5、每孔0.1毫升细胞悬液。 6、置37℃5%CO2培养箱,4天后取出观察,并在板盖上打上标记,做好记录并统计结果。 7、继续培养时,则在第4-5天更换1/2培养基,约第7-9天可以收获培养液上清用于检测抗体。并重复检测1-2次。 8、选择单克隆生长孔,生长良好,阳性强者,转移到24孔板再做克隆经培养或扩大培养。 五、实验结果: 实验结果以总细胞孔(如96孔)中出现克隆孔统计出克隆百分率,并可进一步按单细胞孔、双细胞孔、多细胞孔分别计算出百分率。 六、注意事项: 1、注意无菌操作,一旦发现污染(孔)必须及时处理; 2、计数细胞要求准确,稀释量亦要准确,否则将造成一孔多细胞克隆或克隆百分离太低; 3、在计数克隆出现率之前,不宜更换培养液,也不宜强烈振动培养板; 4、做克隆化培养的小牛血清必须是优质血清; 5、若做克隆抗体检测时,特别要保护细胞的生长状况,防止细胞生长不良甚至丢失。 七、说明: 哺乳动物细胞通过分离、稀释接种,培养在适宜于单细胞生长的培养液中,形成细胞克隆。运用这项技术可以制作细胞成活曲线,即在接种相同数量细胞的培养瓶中,加入不同浓度的化学药品,或照以不同剂量的射线,观察其对细胞的听见害程度。由此可以在哺乳类细胞中进行诱变试验及分离突变细胞。
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