本文目录一览实验动物的常用给药方法包括哪些2，请问兽药怎样正确进行使用呢3，与实验动物和动物实验有关的论文中应记载哪些与动物相关的内4，动物实验常用动物及给药方法有哪些5，动物学实验的实验动物常见的处理方法6，实验动物饮水消毒用什么比较……
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1，实验动物的常用给药方法包括哪些
2，请问兽药怎样正确进行使用呢
我们在养殖生产过程中经常会遇到动物生病的情况，为了减少损失，我们要对动物进行治疗，这就需要我们正确使用兽药，那么兽药应该如何正确使用呢？接下来我和大家分享一下我对观点？1、对疫病要做出正确诊断对症下药 正确和明确的诊断是正确选择用药的前提。不能在畜禽发病还没有确诊的情况下，仅凭想当然就随意、盲目地用药。当发生疾病时，必须仔细观察其症状，必要时还要进行剖检或采集病料送有关部门进行实验室诊断。只有在准确诊断的基础上有针对性地选择用药，才能获得应有的疗效。不同的疾病用药不同，同一种疾病也不能长期使用一种药物治疗，因为有的病菌会产生抗药性。临床上，根据病因和症状选择药物是减少浪费、降低成本的有效方法。一般来说，用药越早效果越好。特别是微生物感染性疾病，及早用药能迅速控制病情。但细菌性痢疾却不宜早止泻，因为这样会使病菌无法及时排除，使其在体内大量繁殖，反而会引起更为严重的腹泻。2、控制用药剂量保证有效剂量 在实际生产中，应该按照厂家指导的剂量或遵医嘱使用。剂量小达不到预防或治疗效果，而且容易导致耐药性菌株的产生；但剂量并不是越大效果越好，很多药物大剂量使用，不仅造成药物残留，而且会发生畜禽中毒。3、注意药物溶解度和饮水量饮水给药要考虑药物的溶解度和畜禽的饮水量，确保畜禽吃到足够剂量的药物。最好将饮水量多和饮水量少的动物分开饮水给药，饮水量少的动物应适当延长饮水时间。4、搅拌均匀拌入饲料服用的药物必须搅拌均匀，防止畜禽采食药物的剂量不一致。如药物搅拌不均匀，会造成吃得多的畜禽可能发生中毒，而吃得少的起不到治疗效果。同样，要将采食量多的动物与采食量少的动物分开饲喂，采食量少的动物应延长采食时间。5、选择适宜给药途径一般情况下，能用口服的药物最好随饮水、饲料给药而不采取肌肉注射。不仅方便、省工，而且还可减少因大面积抓捕带来的一些应激反应。肌肉注射能解决问题的，一般不采取静脉注射。6、合理控制用药疗程药物连续使用时间，必须达到一个疗程以上。疗程不够，致使药物不能维持有效的浓度和作用时间，有的病原体只能暂时被抑制，并没有被杀灭。一旦停止用药，受到抑制的病原体会重新生长、繁殖，使疫病复发，最终造成治疗失败。因此，不可使用1～2次无疗效就停药，或急于调换药物品种。因为很多药物，需使用一个疗程后才显示出疗效。用药时，应按照使用说明书或遵医嘱，严格控制用药疗程。以上就是一些关于如和正确使用兽药的方法，希望能帮助到大家。
3，与实验动物和动物实验有关的论文中应记载哪些与动物相关的内
（1）实验动物的品种、品系，避免俗称。如SD大鼠不能称为大白鼠，KM小鼠不能称为小白鼠。 （2）遗传背景、微生物控制级别。应说明是近交系、突变系、封闭群、杂交群中的哪一类，普通级、清洁级、SPF级、无菌级中的哪一级。 （3）动物数量、性别、年龄、体重。 （4）提供实验动物和动物实验的单位，及实验动物和动物实验条件的合格证。 （5）动物实验条件。如饲料、饮水、垫料、笼具情况，温度、湿度、噪音、照度等。 （6）对动物进行的处理。如分组、麻醉、给药、处死等情况。
4，动物实验常用动物及给药方法有哪些
常用动物有小鼠，大鼠，兔，蟾蜍等。主要给药方法有喂食（将药掺入水或食物中），静脉注射，腹腔注射等。
5，动物学实验的实验动物常见的处理方法
一、编号实验动物常需要标记以示区别。编号的方法很多，根据动物的种类数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法。(一)挂牌法：将号码烙压在圆形或方形金属牌上(最好用铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈),或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带上，将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大型动物。(二)打号法：用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵，用耳号钳刺上号码，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。该法适用于耳朵比较大的兔、狗等动物。(三)针刺法：用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下，在受刺部位留有一黑色标记。该法适用于大小鼠、豚鼠等。在实验动物数量少的情况下，也可用于兔、狗等动物。(四)化学药品涂染动物被毛法：经常应用的涂染化学药品有涂染红色：0.5%中性红或品红溶液涂染黄色：3-5%苦味酸溶液涂染黑色：煤焦油的酒精溶液根据实验分组编号的需要，可用一种化学药品涂染实验动物动物背部被毛就可以。如果实验动物数量较多，则可以选择两种染料。该方法对于实验周期短的实验动物较合适，时间长了染料易退掉；对于哺乳期的子畜也不适合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。(五)剪毛法：该法适用于大、中型动物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码，此法编号清楚可靠，但只适于短期观察。(六)打孔或剪缺口法：可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一定的号码。如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻一下,以免愈合后看不出来。该法可以编至1～ 9999号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用。二、分组(一)分组的原则：进行动物实验时，经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。动物分组应按随机分配的原则，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果，特别是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行。每组动物数量应按实验周期长短、实验类型及统计学要求而定。如果是慢性实验或需要定期处死动物进行检验的实验，就要求选较多的动物，以补足动物自然死亡和认为处死所丧失的数量，确保实验结束时有合乎统计学要求的动物数量存在。(二)建立对照组：分组时应建立对照组。1.自身对照组：是指实验数据而言。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果，此法可排除生物间的个体差异。2.平行对照组：有正对照组和负对照组两种。给实验组动物某种处理，而给正对照组用同样方法进行处理，但并不采用实验所要求的药物或手段，负对照组则不给任何处理。3.具体分组时，应避免人为因素, 随机把所有的动物进行编号，然后令其双数为A组(实验组),单数为B组(对照组)即可或反之。如果要分若干个组时，应该用随机数字表示进行完全随机分组。 一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。(一)剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物采血或新生乳牛放血制备血清常用此法。(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳缘静脉注射或尾静脉注射时常用此法。(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法。如动物被毛较长，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。本法适用于暴露外科手术区。(四)脱毛法：脱毛法是用化学药品脱去动物被毛的方法。首先将被毛剪短，然后用棉球蘸取脱毛剂，在所需部位涂一薄层，2～3分钟后用温水洗去脱落的被毛，用纱布擦干，再涂一层油脂即可。适用于狗等大动物的脱毛剂配方为：硫化钠10g，生石灰15g，溶于100ml水中。适用于兔、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1. 硫化钠3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加适量水调成糊状；2. 硫化钠8g,淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化钠8g溶于100ml水中。二、实验动物的给药在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。(一)注射给药法1. 皮下注射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。3. 肌肉注射 当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。4. 腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。5. 静脉注射 是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。6. 淋巴囊注射 蛙类常采用此法,其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。(二)经口给药法1. 口服法：把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取。此法优点在于简单方便，缺点是不能保证剂量准确。一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，制造某些与食物有关的人类疾病动物模型。2. 灌胃法：在急性实验中,多采用灌胃法。此法剂量准确。灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。小鼠的灌胃针长约4～5cm，直径为1mm，大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。灌胃针的尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空的。焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道。针头金属球端弯曲成20°左右的角度，以适应口腔、食道的生理弯曲度走向。(三)其它途径给药方法 1. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药。如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛。2. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。3. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液。4. 脑内给药：此法常用于微生物学动物实验,将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。5. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉。兔直肠内给药时,常采用灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替。6. 关节腔内给药：此法常用于关节炎的动物模型复制。
6，实验动物饮水消毒用什么比较好
你好！我们做实验一般用纯净水。仅代表个人观点，不喜勿喷，谢谢。实验动物饮水箱消毒灭菌需要1，清除供水系统内的生物膜；2杀菌广谱；3不会腐蚀供水设施；4杀菌后无残留。DCW次氯酸溶液可以用于实验动物饮水杀菌
7，请教动物实验中如何解决药物水溶性问题
按照楼上的方法，可以试试，调整不同比例，以空白溶液作对照。另外，如果还是很难溶，建议模仿紫杉醇的配方，加点蓖麻油，但是量必须少于10%，否则毒性太大。吐温不要加多，你可以做小试，百分之几的加，吐温过多对动物有毒性，做出的结果就不准确了。
8，开药水给动物喝如阿莫西林强力霉素土霉素佛派酸等能加盐
如若只是饮水的话，加补液盐，葡萄糖等都没有问题，如果是静脉给药就得注意了，而且抗生素是有配伍禁忌的，因此一般联合用药的话，也不要超过三种以上（某些药物会对肝肾、骨髓等造成损伤）！
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