本文目录一览实验动物的常用给药方法包括哪些2，如何通过细胞实验计算动物实验的用药浓度3，如何根据动物给药剂量推算细胞给药剂量4，细胞实验中如何确定是含药血清给药还是无血清给药5，怎样由细胞实验IC50推算动物实验用药剂量6，举例说明动物……
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1，实验动物的常用给药方法包括哪些
2，如何通过细胞实验计算动物实验的用药浓度
阳性药要看你的需要了，小鼠用药剂量应该按人鼠计量公式（人：70kg，临床用量1mg)小鼠（20g）=1×0.0026×50＝0.13mg／kg换算下就可以了！一般都是以人的临床最大剂量为实验动物的低剂量，然后按(1:2)以此类推确定中剂量、高剂量
3，如何根据动物给药剂量推算细胞给药剂量
1. 算出动物体内的药物分布体积2. 算出浓度3. 浓度用于培养液
4，细胞实验中如何确定是含药血清给药还是无血清给药
朋友你好！在含药血清药理作用强度与体内给药的量效关系研究、给体外实验体系中含药血清加入量 的多少对药理效应药理效应观察及对器官、组织、细胞的影响等为主.
5，怎样由细胞实验IC50推算动物实验用药剂量
IC50是半抑制率，意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度，然后计算各自的抑制率，以药品的浓度为横坐标，抑制率为纵坐标作图，然后得到50%抑制率时候的药品浓度，就是IC50。要点：药品2倍稀释，多做梯度，做点线图即可!高保真生物技术有限公司，实验整体外包服务~~
6，举例说明动物细胞培养可以用于生物制药的哪些方面
动物细胞培养是现代生物制药的重要技术之一，不仅可以通过直接培养动物细胞制备相关药用产 品，而且还可以作为宿主细胞表达生产原核细胞所不能生产的药用物质。许多人用和兽用的重要蛋白质 药物和疫苗，尤其是那些分子量较大、结构较复杂或糖基化（glycosylated）的蛋白质来说，动物细胞 培养是首选的生产方式。
7，关于细胞观察实验的一些换算
您好，现在这个行业发展的不错，生物实验技术外包也会跟着发展，比如一些高校或者企业部分实验不想自己内部开展，或者涉及的设备比较昂贵，技术要求高，都会寻求外包。但是现在竞争也比较大，的得看单位这边整体做的怎么样。其次要看下你选择单位的规模如何，上海这边的，你可以看下基尔顿生物，原代细胞培养，动物造模，整体课题外包。IC50是半抑制率，意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度，然后计算各自的抑制率，以药品的浓度为横坐标，抑制率为纵坐标作图，然后得到50%抑制率时候的药品浓度，就是IC50。要点：药品2倍稀释，多做梯度，做点线图即可!观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量： 1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量
8，如何决定细胞培养中的该细胞因子加入剂量
博凌科为解答：临床用药浓度和细胞培养的药物干预浓度无法直接换算，有两方面原因，一是临床用药剂量不等同于血药浓度，即使是已知的血药浓度，也不等同于作用于靶 器官/细胞的药物浓度。二是体外细胞学实验是药物作用于孤立的细胞，而细胞在体内要受到众多因素和内环境的影响，对药物的敏感性会有很大的不同。所以你的问题很难回答，常规的实验思路是这样的：(1)体外实验，研究药物对细胞是否有作用，如有作用，测出其量效关系和时效关系，进一步研究其作用机理。(2)体内实验之前，研究一下该药物在体内的药代动力学，毒性等。(3)动物体内实验，研究药物作用的有效剂量给药方式，进一步阐述其机理。(4)临床实验。所以对于你的问题，我的想法是，不必拘泥于同临床用药剂量一致性的问题。以该药物的血清浓度为标尺(10-12iu/l)，上下呈10倍药物浓度浮 动，如0.001 iu/l、0.01 iu/l、0.1 iu/l、1 iu/l、10 iu/l、100 iu/l做一次六孔板实验，得到大致的有效浓度范围后，按此道理再做一次六孔板实验(倍比关系)，就可以确定其作用的量效关系了。最后选定理想的作用剂量 研究其对细胞具体功能的影响和机制等。胞外液也叫内环境、脑脊液等:组织液(组织间隙液的简称)，是多细胞动物的细胞直接生活的体内液体环境外界环境也叫外环境，是多细胞动物个体生活的体外环境人体内。占体液总量的三分之一，构成了体内细胞生活的液体环境.主要包括，存在于细胞外的体液叫做细胞外液(extracellular fluid ECF)。人体内的细胞外液、血浆(血液的液体部分)和淋巴，这个液体环境叫做人体的内环境
9，动物试验给药剂量怎么定
观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量：1.先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一作为应用剂量，一般可取1/10～1/5。2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的剂量。4.确定剂量后，如第一次用药的作用不明显，动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。5.用大动物进行实验时，防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15～1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。6.确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。一般说确定的给药剂量是指成年动物的，如是幼龄动物，剂量应减小。如以狗为例：6个月以上的狗给药剂量为1份时，3～6个月的给1/2份，45～89日的给1/4份，20～44日的给1/8份，10～19日的给1/16份。7.确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同。以口服量为100时，皮下注射量为30～50，肌肉注射量为20～30，静脉注射量为25。二、人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同，一般动物的耐受性要比人大，单位体重的用药量动物比人要高。必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算：人用药量：1小鼠、大鼠：50～100兔、豚鼠：15～20狗、猫：5～10以上系按单位体重口服用药量换算。如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射，换算比例应适当减小些。ic50是半抑制率，意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度，然后计算各自的抑制率，以药品的浓度为横坐标，抑制率为纵坐标作图，然后得到50%抑制率时候的药品浓度，就是ic50。要点：药品2倍稀释，多做梯度，做点线图即可!观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量： 1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量
10，给药剂量临床常用量动物等效面积系数培养基内血清稀释度中培养
有限稀释法是一种常用的克隆方法。 将需要再克隆的细胞株自培养孔内吸出并作细胞计数，计出1mL的细胞数。 用HT培养液稀释， 使细胞浓度为50～60个/mL，于96孔培养板中每孔加0.1mL(五六个细胞/孔)。接种2排，剩余细胞悬液用HT培养液作倍比稀释，再接种2排，如此类推，直至使每孔含0.5～1个细胞。培养7～10d后，选择单个克隆生长的阳性孔再一次进行克隆。一般需要如此重复3～5次，直至达100％阳性孔率时即可，以确保抗体由单个克隆所产生。例如： 实验细胞克隆化培养技术—有限稀释法一、实验目的： 1、掌握用有限稀释法进行细胞克隆化培养技术； 2、学会细胞克隆形成的辩观察技能； 3、配合抗体分泌细胞筛选技术，确定抗体分泌细胞。 二、实验原理： 克隆化培养即单细胞培养技术，用有限稀释法进行杂交瘤细胞克隆化培养，可以及时确定阳性杂交瘤细胞株，同时淘汰因发生染色体丢失或抗体的轻、重链基因分离而出现无抗体分泌阴性细胞株。 一般杂交瘤细胞需经过52—3次反复克隆后，才能达到100%细胞阳性率。 该办法亦适用于一般细胞培养中的细胞纯化、突变细胞株的选择，识别和分离。是细胞株的常用方法。 三、实验材料： 杂交瘤细胞、25毫升培养瓶、96孔细胞培养板（天津有机玻璃厂）、移液管（1毫升、5毫升、10毫升）、弯头滴管、倒置显微镜、CO2培养箱、白细胞计数板、计数器、盖玻片、防水笔、RPMI-1640、小牛血清、青链霉素、10毫升刻度离心管，00橡胶塞，饲养细胞（3-6×105/ml、见腹腔细胞的制备）。 四、实验步骤： 1、分装了每孔0.1毫升腹腔细胞的96孔细胞培养板（可提前24小时准备就绪，置CO2培养箱中备用）； 2、自细胞培养瓶中收集长势良好的杂交瘤细胞（亦可自24孔培养板孔中收集），制成悬液。3、按白细胞计数方法准确计得细胞悬液的细胞数，一般在105/毫升左右。 4、取3支10毫升刻度离心管排列在超净工作台试管架上，先用无血清培养基将细胞稀释至103/毫升，再用含15%小牛血清的完全培养基稀释到101/毫升细胞，即每0.1毫升1个细胞。 5、每孔0.1毫升细胞悬液。 6、置37℃5%CO2培养箱，4天后取出观察，并在板盖上打上标记，做好记录并统计结果。 7、继续培养时，则在第4-5天更换1/2培养基，约第7-9天可以收获培养液上清用于检测抗体。并重复检测1-2次。 8、选择单克隆生长孔，生长良好，阳性强者，转移到24孔板再做克隆经培养或扩大培养。 五、实验结果： 实验结果以总细胞孔（如96孔）中出现克隆孔统计出克隆百分率，并可进一步按单细胞孔、双细胞孔、多细胞孔分别计算出百分率。 六、注意事项： 1、注意无菌操作，一旦发现污染（孔）必须及时处理； 2、计数细胞要求准确，稀释量亦要准确，否则将造成一孔多细胞克隆或克隆百分离太低； 3、在计数克隆出现率之前，不宜更换培养液，也不宜强烈振动培养板； 4、做克隆化培养的小牛血清必须是优质血清； 5、若做克隆抗体检测时，特别要保护细胞的生长状况，防止细胞生长不良甚至丢失。 七、说明： 哺乳动物细胞通过分离、稀释接种，培养在适宜于单细胞生长的培养液中，形成细胞克隆。运用这项技术可以制作细胞成活曲线，即在接种相同数量细胞的培养瓶中，加入不同浓度的化学药品，或照以不同剂量的射线，观察其对细胞的听见害程度。由此可以在哺乳类细胞中进行诱变试验及分离突变细胞。
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