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动物实验给药途径缩写是,给药途径中透皮贴剂的缩写是TP吗

本文目录一览给药途径中透皮贴剂的缩写是TP吗2,常用的给药途径英文缩写是什么3,请问ipig是什么给药途径的缩写4,实验动物的常用给药方法包括哪些5,动物实验常用动物及给药方法有哪些6,求给药途径7,动物试验给药剂量怎么定8,请英语牛人……

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1,给药途径中透皮贴剂的缩写是TP吗

也许是的。
是的。

动物实验给药途径缩写是

2,常用的给药途径英文缩写是什么

拉丁文缩写 中文意义 ac 饭前 pc 饭后  am 上午 pm 下午 sos 需要时,限用一次 prn 必要时,长期备用医嘱  st 立即,急速 DC取消 pN 每晚 hs 睡前 qd 每日一次 Bid 每日二次 tid 每日三次 Qid 每日四次 qod 隔日一次 Q6h 每6小时一次 lnj 注射剂 Tab 片剂 pil 丸剂 p.o.口服 iH 皮下注射 im 肌肉注射 iv 静脉注射 iv,gtt 静脉滴注

动物实验给药途径缩写是

3,请问ipig是什么给药途径的缩写

静脉注射(iv)腹腔注射(ip)口服(po)皮下注射(sc)灌胃(ig)

动物实验给药途径缩写是

4,实验动物的常用给药方法包括哪些

静脉给药,灌胃给药,皮下给药
腹腔注射 皮下注射 静脉注射 灌胃

5,动物实验常用动物及给药方法有哪些

常用动物有小鼠,大鼠,兔,蟾蜍等。主要给药方法有喂食(将药掺入水或食物中),静脉注射,腹腔注射等。
静脉给药,灌胃给药,皮下给药

6,求给药途径

口服,舌下给药,静脉注射,肌肉注射,皮下注射,腹腔注射(人不常用),脊髓(麻醉给药),直肠给药,阴道给药,皮肤/粘膜给药(这个范围比较宽,有贴剂、洗剂等等,或者和阴道、尿道等通常局部给药),吸入给药(肺部、口腔、鼻腔给药都应属于此),局部眼科给药,尿道给药。这个太多了,只要你能想的到的都能给药。但具体其实也就分为口服、注射、局部、肺给药。

7,动物试验给药剂量怎么定

观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量:1.先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一作为应用剂量,一般可取1/10~1/5。2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的剂量。4.确定剂量后,如第一次用药的作用不明显,动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则更应慎重分析。5.用大动物进行实验时,防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15~1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。6.确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼龄动物,剂量应减小。如以狗为例:6个月以上的狗给药剂量为1份时,3~6个月的给1/2份,45~89日的给1/4份,20~44日的给1/8份,10~19日的给1/16份。7.确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同。以口服量为100时,皮下注射量为30~50,肌肉注射量为20~30,静脉注射量为25。二、人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同,一般动物的耐受性要比人大,单位体重的用药量动物比人要高。必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算:人用药量:1小鼠、大鼠:50~100兔、豚鼠:15~20狗、猫:5~10以上系按单位体重口服用药量换算。如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射,换算比例应适当减小些。
ic50是半抑制率,意思是抑制率50%的时候药物的浓度。把药品稀释成不同的浓度,然后计算各自的抑制率,以药品的浓度为横坐标,抑制率为纵坐标作图,然后得到50%抑制率时候的药品浓度,就是ic50。要点:药品2倍稀释,多做梯度,做点线图即可!观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量: 1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量

8,请英语牛人帮忙翻译止血药的动物实验

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需要注意:如强调一种方法,剪尾用tail-docking;而实验过程中强调的是剪尾动作,我使用的是tail-cleavage和cut,这并不矛盾,而是最严谨的用词。”3 个阿给组”应当是三个“处理组”吧?(1) Influence on the bleeding time of tail-docking little mouseFifty health Kunming mice (Mus musculus castaneus) (Number: males=females) were divided into five groups as follows: high-dosage treatment group (20g/kg), middle-dosage treatment group (10g/kg), low-dosage treatment group (5g/kg), Yunnan Baiyao (White Drug-Powder) positive control group (10g/kg), and Saline negative control group. Dosage regimen of once tail intravenous injection was used, 30 minutes after the regimen, cut off the tails quickly from ca. 1 cm above the tail-tips of the mice with sharp scissors and recorded time with a stop watch immediately in parallel with adsorption of the bleeding blood with filter papers. The time from tail-cleavage to bleeding-stopping was considered as the bleeding time of tail-docking of little mice. (2) Influence on vein bleeding time of ear edge of rabbitsThirty health Japanese Big-ear Rabbit (Lepus brachyurus) were randomly divided into five groups according to their body weights (six rabbits per group with equivalent males and females): high-dosage treatment group (20g/kg), middle-dosage treatment group (10g/kg), low-dosage treatment group (5g/kg), Yunnan Baiyao positive control group (10g/kg), and Saline control group. Dosage regimen of once ear-edge intravenous injection was used to the rabbits of the three treatment groups and the Yunnan Baiyao positive control group according to the designed dosages in the experiment, while those of the negative control group were injected saline with equivalent volume, 30 minutes after the regimen, punctured the veins in the ear-edge vein area of the hair-cut and disinfected ear-tips of the rabbits with disposable blood lancets, recorded time after the wounded area began to bleed, then dipped and absorbed the blood carefully with filter-paper strips in 20 minutes’ interval until the blood was not oozed out any longer (non-blood dipped in the filter-paper strips), the time from bleeding to bleeding-stopping was recorded as bleeding time.
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