本文目录一览新药的动物试验该怎么做是不是用小白鼠做实验分析药物在它体内2，常用实验动物的给药方法有3，请教动物实验中如何解决药物水溶性问题4，药理学实验动物用药量计算5，如何决定细胞培养中的该细胞因子加入剂量6，给药剂量临床常用量动物等……
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1，新药的动物试验该怎么做是不是用小白鼠做实验分析药物在它体内
具体看什么药，实验动物的选择比较多，不一定是小鼠，不过小鼠应该是最经济的
2，常用实验动物的给药方法有
3，请教动物实验中如何解决药物水溶性问题
吐温不要加多，你可以做小试，百分之几的加，吐温过多对动物有毒性，做出的结果就不准确了。按照楼上的方法，可以试试，调整不同比例，以空白溶液作对照。另外，如果还是很难溶，建议模仿紫杉醇的配方，加点蓖麻油，但是量必须少于10%，否则毒性太大。
4，药理学实验动物用药量计算
静注硫喷妥钠剂量为100mg/kg，容量为1ml/kg，表示100mg|1ml.该药0.5g=500mg,既是500|100=5ml, 兔体重2.2kg，容量为1ml/kg,表示,2.2*1=2.2ml所以应配成5ml。注射的药量是2.2ml推荐一个免费教育教学资源下载网站-课件素材库 <a href="http://wenwen.soso.com/z/urlalertpage.e?sp=shttp%3a%2f%2fwww.kjxy8.cn%2fcaidown%2f" target="_blank">http://www.kjxy8.cn/caidown/</a>，教案/论文/反思/说课/课件下载 /课本插图/ 试题试卷/ 课件视频教程/课件制作素材等资源约20多万条，相关教育教学资源应有尽有，只有你想不到的，没有你找不到的！
5，如何决定细胞培养中的该细胞因子加入剂量
博凌科为解答：临床用药浓度和细胞培养的药物干预浓度无法直接换算，有两方面原因，一是临床用药剂量不等同于血药浓度，即使是已知的血药浓度，也不等同于作用于靶 器官/细胞的药物浓度。二是体外细胞学实验是药物作用于孤立的细胞，而细胞在体内要受到众多因素和内环境的影响，对药物的敏感性会有很大的不同。所以你的问题很难回答，常规的实验思路是这样的：(1)体外实验，研究药物对细胞是否有作用，如有作用，测出其量效关系和时效关系，进一步研究其作用机理。(2)体内实验之前，研究一下该药物在体内的药代动力学，毒性等。(3)动物体内实验，研究药物作用的有效剂量给药方式，进一步阐述其机理。(4)临床实验。所以对于你的问题，我的想法是，不必拘泥于同临床用药剂量一致性的问题。以该药物的血清浓度为标尺(10-12iu/l)，上下呈10倍药物浓度浮 动，如0.001 iu/l、0.01 iu/l、0.1 iu/l、1 iu/l、10 iu/l、100 iu/l做一次六孔板实验，得到大致的有效浓度范围后，按此道理再做一次六孔板实验(倍比关系)，就可以确定其作用的量效关系了。最后选定理想的作用剂量 研究其对细胞具体功能的影响和机制等。胞外液也叫内环境、脑脊液等:组织液(组织间隙液的简称)，是多细胞动物的细胞直接生活的体内液体环境外界环境也叫外环境，是多细胞动物个体生活的体外环境人体内。占体液总量的三分之一，构成了体内细胞生活的液体环境.主要包括，存在于细胞外的体液叫做细胞外液(extracellular fluid ECF)。人体内的细胞外液、血浆(血液的液体部分)和淋巴，这个液体环境叫做人体的内环境
6，给药剂量临床常用量动物等效面积系数培养基内血清稀释度中培养
有限稀释法是一种常用的克隆方法。 将需要再克隆的细胞株自培养孔内吸出并作细胞计数，计出1mL的细胞数。 用HT培养液稀释， 使细胞浓度为50～60个/mL，于96孔培养板中每孔加0.1mL(五六个细胞/孔)。接种2排，剩余细胞悬液用HT培养液作倍比稀释，再接种2排，如此类推，直至使每孔含0.5～1个细胞。培养7～10d后，选择单个克隆生长的阳性孔再一次进行克隆。一般需要如此重复3～5次，直至达100％阳性孔率时即可，以确保抗体由单个克隆所产生。例如： 实验细胞克隆化培养技术—有限稀释法一、实验目的： 1、掌握用有限稀释法进行细胞克隆化培养技术； 2、学会细胞克隆形成的辩观察技能； 3、配合抗体分泌细胞筛选技术，确定抗体分泌细胞。 二、实验原理： 克隆化培养即单细胞培养技术，用有限稀释法进行杂交瘤细胞克隆化培养，可以及时确定阳性杂交瘤细胞株，同时淘汰因发生染色体丢失或抗体的轻、重链基因分离而出现无抗体分泌阴性细胞株。 一般杂交瘤细胞需经过52—3次反复克隆后，才能达到100%细胞阳性率。 该办法亦适用于一般细胞培养中的细胞纯化、突变细胞株的选择，识别和分离。是细胞株的常用方法。 三、实验材料： 杂交瘤细胞、25毫升培养瓶、96孔细胞培养板（天津有机玻璃厂）、移液管（1毫升、5毫升、10毫升）、弯头滴管、倒置显微镜、CO2培养箱、白细胞计数板、计数器、盖玻片、防水笔、RPMI-1640、小牛血清、青链霉素、10毫升刻度离心管，00橡胶塞，饲养细胞（3-6×105/ml、见腹腔细胞的制备）。 四、实验步骤： 1、分装了每孔0.1毫升腹腔细胞的96孔细胞培养板（可提前24小时准备就绪，置CO2培养箱中备用）； 2、自细胞培养瓶中收集长势良好的杂交瘤细胞（亦可自24孔培养板孔中收集），制成悬液。3、按白细胞计数方法准确计得细胞悬液的细胞数，一般在105/毫升左右。 4、取3支10毫升刻度离心管排列在超净工作台试管架上，先用无血清培养基将细胞稀释至103/毫升，再用含15%小牛血清的完全培养基稀释到101/毫升细胞，即每0.1毫升1个细胞。 5、每孔0.1毫升细胞悬液。 6、置37℃5%CO2培养箱，4天后取出观察，并在板盖上打上标记，做好记录并统计结果。 7、继续培养时，则在第4-5天更换1/2培养基，约第7-9天可以收获培养液上清用于检测抗体。并重复检测1-2次。 8、选择单克隆生长孔，生长良好，阳性强者，转移到24孔板再做克隆经培养或扩大培养。 五、实验结果： 实验结果以总细胞孔（如96孔）中出现克隆孔统计出克隆百分率，并可进一步按单细胞孔、双细胞孔、多细胞孔分别计算出百分率。 六、注意事项： 1、注意无菌操作，一旦发现污染（孔）必须及时处理； 2、计数细胞要求准确，稀释量亦要准确，否则将造成一孔多细胞克隆或克隆百分离太低； 3、在计数克隆出现率之前，不宜更换培养液，也不宜强烈振动培养板； 4、做克隆化培养的小牛血清必须是优质血清； 5、若做克隆抗体检测时，特别要保护细胞的生长状况，防止细胞生长不良甚至丢失。 七、说明： 哺乳动物细胞通过分离、稀释接种，培养在适宜于单细胞生长的培养液中，形成细胞克隆。运用这项技术可以制作细胞成活曲线，即在接种相同数量细胞的培养瓶中，加入不同浓度的化学药品，或照以不同剂量的射线，观察其对细胞的听见害程度。由此可以在哺乳类细胞中进行诱变试验及分离突变细胞。
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